Denis RASSCHAERT, PR1 denis.rasschaert-at-univ-tours.fr
Ginette DAMBRINE, DR1 INRA ginette.dambrine-at-univ-tours.fr (+33247367458)
Sylvie LAURENT, IE INRA, HDR sylvie.laurent-at-univ-tours.fr (+33247367457)
Thomas FIGUEROA, IE CDD
Adrien LION IE CDD
Elodie BOISSEL, AI CDD
Marjolaine ANDRE, TR CDD
Valérie VIGEANT, Secrétaire CDD
Damien COUPEAU ATER
Grégoire STIK, ATER
Swantje STRASSHEIM, Doctorante
Jennifer LABAILLE, Doctorante
Perrine RASSCHAERT, Doctorante
Equipe TLVI
Institut de Recherche sur la Biologie de l’Insecte (UMR CNRS 6035)
UFR Sciences et Techniques
Université François Rabelais
Parc de Grandmont
37200-Tours
Les recherches du laboratoire sont axées sur les mécanismes transcriptionnels et post-transcriptionnels à l’origine des lymphomes induits par un virus herpès du poulet, le Gallid herpesvirus-2 ou virus de la maladie de Marek (MDV). Ce modèle est le seul exemple de virus herpès animal oncogène présent chez son hôte naturel et contre lequel on dispose d’un vaccin empêchant le développement des lymphomes. La maîtrise expérimentale du système permet de suivre l’évolution de différents marqueurs in vivo, au cours des phases pré-tumorales et au moment de la mise en place des lymphomes viro-induits. L’effet des microARN sur l’expression des gènes viraux, leur impact dans la balance entre réplication et latence virale ainsi que leur rôle dans la lymphomagenèse sont appréhendés en se reposant sur le modèle particulièrement riche qu’est MDV, permettant des études comparatives entre les souches pathogènes et vaccinales.
Etude de la transcription (promoteurs, facteurs de transcription) et des mécanismes de modifications post-transcriptionnelles (épissage alternatif, editing, structure secondaire des primiARN viraux…)
Etude de la régulation des profils de microARN cellulaires et viraux au cours de la réplication virale et de la lymphomagenèse viro-induite
Recherche de cibles cellulaires et virales pour les micro-ARN viraux
Techniques de biologie moléculaire : PCR et RT-PCR, q-PCR, clonages, établissement de banques, 3’et 5’RACE, mutagenèse, bioinformatique
Cultures primaires et infection de cellules par MDV, lignées de lymphomes
Transfection et nucléofection de cellules
Expression de gènes rapporteurs
Analyse des protéines : immunocytochimie, western, co-IP, ChIP
Exploration de la pathogenèse virale in vivo chez le poulet
S. Pfeffer (IBMC, Strasbourg)
P. Busson (IGR, Villejuif)
A. Legrand (CBM, Orléans)
B. Muylkens (Université de Namur, Belgique)
V. Nair (IAH, Compton, GB)
H Le Galludec (Pfizer Santé Animale)
ICP27 protein of Marek’s disease virus interacts with SR proteins and inhibits the splicing of cellular telomerase chTERT and viral vIL8 transcripts. Amor S, Strassheim S, Dambrine G, Remy S, Rasschaert D, Laurent S. J Gen Virol. 2011 Jun ;92(Pt 6):1273-8. Epub 2011 Feb 16.
Alternative splicing and nonsense-mediated decay regulate telomerase reverse transcriptase (TERT) expression during virus-induced lymphomagenesis in vivo. Amor S, Remy S, Dambrine G, Le Vern Y, Rasschaert D, Laurent S. BMC Cancer. 2010 Oct 21 ;10:571.
A p53-dependent promoter associated with polymorphic tandem repeats controls the expression of a viral transcript encoding clustered microRNAs. Stik G, Laurent S, Coupeau D, Coutaud B, Dambrine G, Rasschaert D, Muylkens B. RNA. 2010 Nov ;16(11):2263-76. Epub 2010 Sep 29.
The chicken miR-150 targets the avian orthologue of the functional zebrafish MYB 3’UTR target site. Guillon-Munos A, Dambrine G, Richerioux N, Coupeau D, Muylkens B, Rasschaert D. BMC Mol Biol. 2010 Sep 2 ;11:67.
Marek’s disease virus microRNA designated Mdv1-pre-miR-M4 targets both cellular and viral genes. Muylkens B, Coupeau D, Dambrine G, Trapp S, Rasschaert D. Arch Virol. 2010 Nov ;155(11):1823-37. Epub 2010 Aug 1.